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          內切-β-1,4-葡聚糖酶/纖維素酶試劑盒

          更新時間:2024-05-21

          簡要描述:

          內切-β-1,4-葡聚糖酶/纖維素酶試劑盒
          內切-β-1,4-葡聚糖酶(EC3.2.1.4)存在于細菌、真菌和動物體內,是纖維素酶系的組份之一,這類酶隨機水解β-1,4-糖苷鍵

          內切-β-1,4-葡聚糖酶/纖維素酶試劑盒

          本試劑盒僅供科研使用 1 內切-β-1,4-葡聚糖酶/纖維素酶試劑盒說明書 (貨號:WS3350F 分光法 48 樣) 一、產品簡介: 內切-β-1,4-葡聚糖酶(EC3.2.1.4)存在于細菌、真菌和動物體內,是纖維素酶系的組份 之一,這類酶隨機水解β-1,4-糖苷鍵,將無定形長鏈纖維素分子截短,將其分解成葡萄糖、 纖維二糖、纖維三糖等各種類型的還原糖,在堿性條件下,產生的還原糖能與3,5-二硝基 水楊酸反應生成棕紅色物質,該物質在540nm下有吸收峰,即可得出內切-β-1,4-葡聚 糖酶的酶活性大小。 二、試劑盒組分與配制: 試劑名稱 規格 保存要求 備注 提取液 液體 60mL×1 4℃保存 試劑一 液體 33mL×1 4℃保存 試劑二 粉劑×1 4℃保存 臨用前加 16.5mL 試劑一,80℃浴,攪拌至溶解,仍 4℃保存。 試劑三 液體 33mL×1 4℃保存 標準品 粉體 mg×1 4℃保存 若重新做標曲,則用到該試劑。 三、所需的儀器和用品: 可見分光光度計、1mL 玻璃比色皿(光徑 1cm)、水浴鍋、離心機、可調式移液器、研 缽、冰和蒸餾水。 四、內切-β-1,4-葡聚糖酶/纖維素酶活性測定: 建議正式實驗前選取 2 個樣本做預測定,了解本批樣品情況,熟悉實驗流程,避免實驗 樣本和試劑浪費! 1、樣本制備: ① 組織:稱取約 0.2g 組織(水分充足的樣本可取 1g),加入 1mL 經預冷的 95%乙醇冰 浴勻漿,4℃放置 10min12000rpm4℃離心 5min;棄上清,留沉淀,向沉淀中加入 經預冷的 80%乙醇混勻,4℃放置 10min12000rpm4℃離心 5min;棄上清,留沉淀。 再向沉淀中加入 1mL 經預冷提取液,渦旋混勻,4℃放置 10min12000rpm4℃離心 10min;留上清,棄沉淀。上清液置冰上待測。 ② 細菌/培養細胞:先收集細菌或細胞到離心管內,離心后棄上清;取約 500 萬細菌或細 胞加入 1mL 提取液,超聲波破碎細菌或細胞(冰浴,功率 20%或 200W,超聲 3s,間 10s,重復 30 次);12000rpm4℃離心 10min,取上清,置冰上待測。 【注】:若增加樣本量,可按照細菌或細胞數量(104個):提取液體積(mL)為 5001 的比例進行提取。 ③ 液體樣本:若是澄清液體,直接檢測,若液體樣本渾濁,需 4℃×12000rpm,離心 10min取上清液檢測。 2、上機檢測: ① 可見分光光度計預熱 30min 以上,調節波長至 540nm,蒸餾水調零。 ② 所有試劑解凍至室溫(25℃),在 EP 管中依次加入試劑名稱(μL測定管 對照管 樣本 100 100 試劑一 300 試劑二 300 37℃孵育 60min本試劑盒僅供科研使用 2 試劑三 300 300 混勻,95℃水浴 5min,取出后用自來水或冰水冷卻至室溫, 取全部澄清液體于 1mL 玻璃比色皿(光徑 1cm)中,在 540nm 處讀取吸光值 AΔA=A 測定管-A 對照管(每個樣 本做一個對照管)。 【注】若ΔA 在零附近,可增加樣本取樣質量 W 或增加樣本加樣體積 V1(如增至 150μL則試劑三相應減少),則改變后的 W V1 需代入計算公式重新計算。 五、結果計算: 1、標準曲線方程為 y = 0.0099x - 0.0747x 為標準品質量(μg),y ΔA2、按照蛋白濃度計算 單位定義:每毫克組織蛋白每小時催化產生 1μg 還原糖定義為一個酶活力單位。 內切-β-1,4-葡聚糖酶/纖維素酶活力(μg/h/mg prot)=[(ΔA+0.0747)÷0.0099]÷(Cpr×V1) ÷T =1010.1×( ΔA+0.0747)÷Cpr 3、按樣本鮮重計算 單位定義:每克組織每小時催化產生 1μg 還原糖定義為一個酶活力單位。 內切-β-1,4-葡聚糖酶/纖維素酶活力(μg/h/g 鮮重)=[(ΔA+0.0747)÷0.0099]÷(W×V1÷V) ÷T =1010.1×( ΔA+0.0747)÷W 4、按細菌/細胞密度計算 單位定義:每 1 萬個細菌或細胞每小時催化產生 1μg 還原糖定義為一個酶活力單位。 內切-β-1,4-葡聚糖酶/纖維素酶活力(μg /h/104 cell)=[( ΔA+0.0747)÷0.0099]÷(500×V1÷V) ÷T=2×(ΔA+0.0747) 5、按液體體積計算 單位定義:每毫升液體每小時催化產生 1μg 還原糖定義為一個酶活力單位。 內切-β-1,4-葡聚糖酶/纖維素酶活力(μg /h/mL)=[( ΔA+0.0747)÷0.0099]÷V1 ÷T =1010.1×( ΔA+0.0747) V---加入提取液體積,1 mLV1---加入樣本體積,0.1mLT---反應時間,60min=1 小時; W---樣本質量,g500---細菌或細胞總數,500 萬; Cpr---樣本蛋白質濃度,mg/mL;建議使用本公司的 BCA 蛋白含量檢測試劑盒; 附:標準曲線制作過程: 1 制備標準品母液(2mg/mL):從標準品管中稱量取出 4mg 至一新 EP 管中,再加 2mL 蒸餾水混勻溶解即 2mg/mL 的葡萄糖(母液需在兩天內用且-20℃保存)。 2 把母液用蒸餾水稀釋成六個濃度梯度的標準品:0, 0.4, 0.8, 1.2, 1.6, 2. mg/mL。也可 根據實際樣本來調整標準品濃度。 3 依據對照管的加樣表操作,根據結果即可制作標準曲線。

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