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          普魯蘭酶活性測定試劑盒,微板法

          更新時間:2024-05-21

          簡要描述:

          普魯蘭酶活性測定試劑盒,微板法
          普魯蘭酶是一種水解酶,廣泛存在于微生物及動物、植物體內,能專一地分解淀粉和
          糖原及其衍生物分枝點的α-1.6-葡萄糖昔鍵。它的這種特性最早被用于淀粉結構的理論
          研究,到七十年代,普魯蘭酶的應用已擴展到淀粉糖漿、啤酒和酒精生產等多個淀粉深加
          工領域,并逐步從實驗室階段走向工業化規模。

          普魯蘭酶活性測定試劑盒,微板法

          普魯蘭酶活性測定試劑盒,微板法

          本試劑盒僅供科研使用 1 普魯蘭酶活性測定試劑盒說明書 (貨號:WS8750W 微板法 96 樣) 一、產品簡介: 普魯蘭酶是一種水解酶,廣泛存在于微生物及動物、植物體內,能專一地分解淀粉和 糖原及其衍生物分枝點的α-1.6-葡萄糖昔鍵。它的這種特性最早被用于淀粉結構的理論 研究,到七十年代,普魯蘭酶的應用已擴展到淀粉糖漿、啤酒和酒精生產等多個淀粉深加 工領域,并逐步從實驗室階段走向工業化規模。 普魯蘭酶催化普魯蘭分解產生還原糖,進一步與 3,5-二硝基水楊酸反應,生成棕紅色 氨基化合物,經光譜掃描在 540nm 有特征光吸收,在一定范圍內 540nm 光吸收值與還 原糖生成量成正比。通過光吸收增加速率來計算普魯蘭酶活性大小。 二、試劑盒的組成和配制: 試劑名稱 規格 保存要求 備注 提取液 液體 100mL×1 4℃保存 試劑一 液體 30mL×1 4℃保存 試劑二 粉劑×1 4℃保存 用前甩幾下使粉劑落入底部,再 加入 22mL 試劑一充分溶解備 用;用不完的試劑 4保存; 試劑三 液體 20mL×1 4℃保存 標準品 粉體 mg×1 4℃保存 若重新做標曲,則用到該試劑 三、所需的儀器和用品: 酶標儀、96 孔板、低溫離心機、水浴鍋、可調式移液器、研缽、冰和蒸餾水。 四、普魯蘭酶活性測定: 建議正式實驗前選取 2 個樣本做預測定,了解本批樣品情況,熟悉實驗流程,避免實驗 樣本和試劑浪費! 1、樣本制備: ① 組織樣本: 稱樣本 0.1g(水分充足的樣本可取 0.5g)于研缽中,加入 1mL 提取液,冰浴勻漿后 轉入離心管中。12000rpm4℃離心 10min,取上清,置冰上待測。 【注】:若增加樣本量,可按照組織質量(g):提取液體積(mL)15~10 的比例進行提取 ② 液體樣本:直接測定。若渾濁,離心后取上清檢測。 2、上機檢測: 1 酶標儀預熱 30min 以上,調節波長至 540nm② 在 EP 管中依次加入: 試劑名稱(μL測定管 對照管 樣本 20 20 95℃煮沸 10min 的酶液) 試劑二 100 100 混勻,50℃孵育 30min 試劑三 100 100 混勻,95℃水浴 10min(用封口膜纏緊,以防止水分散失),流 水冷卻至室溫。 蒸餾水 500 500 混勻,取出 200μL 96 孔板中,于 540nm 處讀取吸光值 AΔAA 測定-A 對照(每個樣本做一個自身對照)。本試劑盒僅供科研使用 2 【注】:1.A 測定管的吸光值大于 2,可以用蒸餾水對整個顯色混合液用蒸餾水進行稀釋(如取 顯色混合液 100μL 96 孔板中,再加 100μL 蒸餾水,即稀釋 2 倍),則稀釋倍數 D 代入公式計算。或減少上清液體積 V1(如減至 10μL,則加 10μL 蒸餾水補齊),則 V1 需代入公式重新計算。 2.若ΔA 值在零附近徘徊,可增加樣本加樣體積 V1(如增至 40μL,則最后蒸餾水體積相 應減少,保持反應總體積不變),或延長 50℃孵育時間 T(如增至 60min),則相應的 V1 和反應時間 T 需代入公式重新計算。 五、結果計算: 1、標準曲線方程為 y = 8.154x - 0.0438x 為標準品質量(mg),y ΔA2、按蛋白濃度計算: 單位定義:37℃每毫克蛋白每分鐘產生 1μg 還原糖定義為一個酶活性單位。 普魯蘭酶活性(μg/min /mg prot=[(ΔA+0.0438)÷8.154×103]÷(V1×Cpr )÷T =204.4×(ΔA+0.0438)÷Cpr 3、按鮮重計算: 單位定義:37℃每克組織每分鐘產生 1μg 還原糖定義為一個酶活性單位。 普魯蘭酶活性(μg/min /g 鮮重)=[(ΔA+0.0438)÷8.154×103]÷(W×V1÷V2)÷T =204.4×(ΔA+0.0438)÷W 4、按液體樣本計算: 單位定義:37℃每毫升液體樣本每分鐘產生 1μg 還原糖定義為一個酶活性單位。 普魯蘭酶活性(μg/min /mL 液體)=[(ΔA+0.0438)÷8.154×103]÷W×V1÷T =204.4×(ΔA+0.0438) V---加入提取液體積,1mLV1---加入反應體系中樣本體積,0.02mLT---反應時間,30minW---樣本鮮重,gCpr---樣本蛋白質濃度,mg/mL;建議使用本公司的蛋白含量(考馬斯亮藍法)試劑盒,不 建議使用蛋白含量(BCA ) 試劑盒; 附:標準曲線制作過程: 1 制備標準品母液(5mg/mL):向標準品 EP 管里面加入 1mL 蒸餾水(母液需在兩天 內用且-20℃保存)。 2 把母液稀釋成六個濃度梯度的標準品:0, 1, 2, 3, 4, 5. mg/mL。也可根據實際樣本來 調整標準品濃度。 3 按照:20μL 標準品+100μL 蒸餾水+100μL 試劑三,95℃水浴 10min,冷卻后,再加 500μL 蒸餾水,混勻,取 200μL 96 孔板中,540nm 下測定,根據結果即可制作 標準曲線。

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