總果膠含量試劑盒,微板法

總果膠含量試劑盒,微板法

總果膠含量試劑盒,微板法

本試劑盒僅供科研使用 1 總果膠含量試劑盒說明書 （貨號：WS7170W 微板法 96 樣） 一、產品簡介： 果膠存在于植物的細胞壁和細胞內層，是植物細胞的重要組成部分，屬于碳水化合物 的衍生物，廣泛分布于植物果實、根莖和葉中。 本試劑盒采用咔唑比色法測定總果膠含量。即總果膠在稀酸中水解為半乳糖醛酸，在 硫酸溶液中與咔唑進行縮合反應，生成紫紅色物質，經光譜掃描該物質在 530nm 處有最 大吸收峰，顏色深淺與總果膠含量成正比，進而得出總果膠含量。 二、試劑盒組成和配制： 試劑名稱 規格 保存要求 備注 提取液 液體 120 mL×1 瓶 4℃保存 試劑一 液體 1.5mL×1 支 4℃保存 標準品 粉劑 mg×1 支 4℃保存 若重新做標曲，則用到該試劑 三、所需的儀器和用品： 酶標儀、96 孔板、水浴鍋、可調式移液器、乙醇、濃硫酸、研缽。 四、總果膠含量檢測： 建議正式實驗前選取 2 個樣本做預測定，了解本批樣品情況，熟悉實驗流程，避免實驗 樣本和試劑浪費！ 1、樣本制備： 1 取 0.1g 組織（烘干且過篩后的粉末組織可取 0.01g），加 1.5mL 的 80%乙醇，研磨勻 漿，85℃水浴 10min（及時補充 80%乙醇至 1mL），取出流水冷卻后，8000rpm，25℃ 離心 10min，棄上清，留沉淀， 2 向沉淀中加入 1mL 的 80%乙醇，混勻，85℃水浴 10min（及時補充 80%乙醇至 1mL）， 取出流水冷卻后，8000rpm，25℃離心 10min，棄上清，留沉淀。 3 向沉淀中加入 1mL 提取液，混勻，95℃水浴 60min，流水冷卻至室溫，8000rpm，25℃ 離心 10min，取上清液待測。 2、上機檢測： ① 酶標儀預熱 30min 以上，調節波長為 530nm； ② 可取兩個樣本做適當梯度的稀釋（如 4 倍，即 1 份上清液+3 份蒸餾水），確定 適合本次實驗的稀釋倍數 D。 ③ 在 EP 管中依次加入： 試劑名稱 （µL） 測定管 空白管 （僅做一次） 樣本 70 蒸餾水 70 濃硫酸 420 420 可用封口膜纏緊，85℃水浴 15min 后， 流水冷卻至室溫。 試劑一 14 14 混勻，室溫（25℃）暗處反應 30min（間隔 10min 混勻一次），立即取出 200µL 于 96 孔中，于 530nm 處讀取吸光值 A，△A=A 測定-A 空白。本試劑盒僅供科研使用 2 【注】：1、濃硫酸必須是分析純級別，且不能長期開口放置，否則影響顯色結果。另外濃硫酸具有 強腐蝕性，操作時需特別注意，85℃加熱取出后冷卻再打開蓋子，以防液體飛濺燒傷。 2、顯色反應必須在暗處反應，否則顏色很快消失或者變淡，影響吸光值。 3、若 A 測定管值大于 1.8，可用蒸餾水稀釋樣本即待檢測上清液，則稀釋倍數 D 需代入公 式計算；或若 A 值再零附近可增加樣本取樣質量 W。 五、結果計算： 1、標準曲線方程：y = 1.8749x -0.0018，x 為標準品濃度（mg/mL），y 是△A。 2、總果膠含量(mg/g 重量)=[(ΔA +0.0018) ÷1.8749×V1]÷ (W×V1÷V)×D =0.53×(ΔA +0.0018)÷W×D W---樣本重量，g； V---加入提取液體積，1mL； V1---加入樣本體積，0.07mL； D---稀釋倍數。 附：標準曲線制作過程： 1 制備標準品母液（0.5mg/mL）：臨用前向標準品中加入 2mL 蒸餾水（現配現用）。 2 把母液用蒸餾水稀釋成六個濃度梯度的標準品：0，0.1，0.2，0.3，0.4，0.5. mg/mL。 也可根據實際樣本來調整標準品濃度。 3 依據測定管的加樣表操作，根據結果即可制作標準曲線。